基因组dna的收率较低或无基因组dna，为什么

样品材料老化或者反复冻融导致DNA含量下降：应选择新鲜的材料样品，如新鲜血液、新鲜菌液、刚离体的动物组织或幼嫩的植物组织等，不能立即处理的样品应放入液氮或-70℃低温保存，以免DNA 降解。
2) 样品破壁或者裂解不完全，DNA 未充分释放：动植物样品应在液氮中充分研磨，G+细菌、酵母等破壁较困难的样品应用溶菌酶、Lyticase酶或机械方法协助破壁。
3) 样品过多导致细胞裂解不充分：加样过多导致细胞裂解不充分，细胞裂解不充分。
4) DNA 吸附不均匀：如在上吸附柱前没有加无水乙醇，或使用低浓度乙醇代替无水乙醇，会导致DNA 不能充分沉淀，与硅胶模吸附不彻底，因此应在样品裂解后加适量的无水乙醇，再上吸附柱使DNA 与硅胶模充分吸附。
5) DNA 洗脱不适当：洗脱缓冲液pH 过低会阻碍DNA从硅胶模上洗脱下来，应确保洗脱液pH值在7.0-8.5之间。洗脱液体积过少（<30μl），不易浸透硅胶模，使DNA不能洗脱下来，因此洗脱液体积应大于30μl，超过200μl，所得的DNA 浓度降低。洗脱时可以将洗脱液于65-70℃水浴预热，加入洗脱液后在室温静置2-5分钟，可提高洗脱效率，加大DNA 产量。